Um grande Salve ao nosso querido Professor Guilherme Lacerda

A turma do 3° período de Bioquímica da Unimontes, deixa os sinceros agradecimentos para nosso querido professor Guilherme Lacerda que teve a paciência e a calma para lecionar e nos trasmitir tamanho conhecimento na Bioquímica. Obrigada, Professor!

Relatório de aula Prática 7: Vitaminas- Ascorbato e Radicais Livres

Vitaminas- Ascorbato e Radicais Livres

Introdução

 Consumida por quem quer evitar um resfriado, a vitamina C é um aliado contra  os  radicais  livres,  moléculas  que  circulam  pelo  organismo  e  podem causar  danos  a  compostos  que  encontrarem  pela  frente,  como  DNA  ou proteínas  essenciais  ao  funcionamento  do  corpo.  Essa guerra microscópica pode contribuir para a morte de células e ser a origem do envelhecimento e do câncer.  O ascorbato, componente principal da vitamina C, pode reagir diretamente com o peróxido  de  hidrogênio  (água  oxigenada)  e  transformá-lo em moléculas  de  água  inofensivas  para  o  organismo,  em  vez  de  perigosos radicais livres. A novidade é a maneira como o ascorbato combate a formação dessas moléculas potencialmente nocivas: além de participar diretamente em reações, ele também recicla moléculas chamadas peroxirredoxinas, que funcionam como catalisadores acelerando a transformação de peróxido de hidrogênio  em  água.  Esses catalisadores antioxidantes perdem elétrons na reação com o peróxido de hidrogênio, mas continuam disponíveis na célula. Basta ganharem elétrons outra vez, que estão prontos para recomeçar a reciclagem.  Mas se houver pouca peroxirredoxina ou se a reciclagem não acontecer na velocidade adequada, à reação trava, como uma ampulheta que não é virada deixa de contar o tempo. O peróxido de hidrogênio é subproduto da respiração celular, portanto existe em todas as células. Para minimizar o efeito tóxico, é preciso concentrações adequadas de moléculas para transformá-lo em água

Objetivo

Observar a ação da vitamina C (ascorbato) demonstrando seu efeito no combate aos radicais livres em sua ação antioxidante utilizando um simples suco de abacate.  

Material e Métodos

03 tubos de ensaio;

 ¼ de um abacate maduro;

10 mL de Água oxigenada 10 volumes;

01 Almofariz com pistilo;

01 Erlenmeyer de 250 mL;

100 mL de água destilada;

01 Comprimido de vitamina C comercial;

01 Liquidificador doméstico.

No dia 01 de abril começamos o experimento com os seguintes procedimentos:
Primeiro, batemos em um liquidificador ¾ do abacate com 100 ml de água destilada.
Em seguida, numeramos os tubos de ensaio de 01 a 03 e os organizamos no suporte para tubos.
Com o auxílio do Almofariz com pistilo, diluímos o comprido de vitamina c em 10 ml de água destilada.
Distribuímos, com a ajuda do Erlenmeyer, o suco de abacate com as seguintes combinações:

Tubo 1 – 10 mL de Abacate + 10 mL de vitamina C

Tubo 2 - 10 mL de Abacate + 10 mL de água destilada

Tubo 3 - 10 mL de Abacate + 10 mL de água oxigenada

Observamos os resultados e anotamos nossas conclusões.

Resultados e Discussão

No tubo 01 o suco de abacate manteve a sua cor inicial, não houve alterações.

No tubo 02 o cuco de abacate alterou um pouco a sua cor, se tornando, portanto, um pouco mais desbotado.

No tubo 03 observamos uma imediata mudança de cor, o suco de abacate ficou com uma cor bastante desbotada.

TUBO 01: Cor inicial;

TUBO 02: Cor inicial um pouco desbotada;

TUBO 03: Cor inicial bastante desbotada.

Conclusão

 A vitamina C tem por efeito combater os radicais livres que são responsáveis pelo escurecimento dos frutos. Já a água destilada e a água oxigenada possuem esses radicais livres.

 Assim sendo, o frasco 01 que continha vitamina C manteve sua cor inicial, pois a vitamina C combateu os radicais livres.

 O frasco 02 e 03, que não possuíam vitamina C, tiveram o escurecimento do suco de abacate.

Referências Bibliográficas

 GUIMARAES,  M.  Identificado  novo  mecanismo  pelo  qual  a  vitamina  C

combate  radicais  livres.  nº  134.  São  Paulo:  Revista  FAPESP,  2007.

Disponível em <http://revistapesquisa2.fapesp.br/?art=3195&bd=1&pg=1&lg=> 

Relatório de aula Prática 4:Fracionamento Celular

Fracionamento Celular

 Introdução

O fracionamento celular consiste na separação, por centrifugação, das estruturas sub-celulares, após rompimento das células.

Objetivo

Separar os componentes celulares através do fracionamento por centrifugação para o estudo da organização molecular e do funcionamento da célula.

Material e Métodos

02 a 03 folhas de Tradescantia purpúrea

01 almofariz (gral) e 01 pistilo

02 tubos de micro-centrifuga

Pipetas Pasteur ou conta-gotas

Centrifuga

Detergente de louça (liquido ou gel)

Água acidulada (02 a 03 gotas de vinagre – ou acido acético – em  mais ou menos 100 ml de água).

1-Colocou-se 3 ml de água acidulada em um almofariz (ou um pires ). A razão para usar água acidulada é porque o pigmento antocianina que iremos separar cloroplastos é rosa ou roxo em PH ácido, mas verde em PH alcalino. Como iríamos separar a antocianina da clorofila, que também é verde, ficaria difícil de notar a diferença dos dois pigmentos se por ventura a água da torneira for levemente alcalina.

2-Esmagou-se nessa solução 2 a 3 folhas de Tradescantia com um pistilo.

3-Transferiu-se com uma pipeta de Pasteur a parte liquido do homogeneizado para um tubo de micro-centrifuga e centrifugou rapidamente (15 seg) para retirar fibras de celulose e outros resíduos maiores;

4-Transferiu-se o sobrenadante para um novo tubo. Observou-se que o liquido tem cor marrom. Centrifugou por 5 minutos; pode-se ver claramente, após a centrifugação, que o sobrenadante é um liquido roxo, pela presença do pigmento hidrossolúvel antocianina. No fundo do tubo ficou um precipitado verde, pela presença dos cloroplastos, que são organelas grandes e por isso vão para o fundo do tubo.

5-Transferiu-se o sobrenadante para um novo tubo;

6-Com a pipeta Pasteur, ressuspendeu-se o precipitado (cloroplastos) em água acidulada.

7-Acrescentou-se uma gota de detergente no tubo contendo a solução “verde” e agitou o tubo por mais ou menos um minuto;

8-Centrifugou-se por cinco minutos os tubos com o sobrenadante (“solução roxa”) e com precipitado (“solução verde”).

Resultados e Discussão

Notou-se que os cloroplastos não precipitavam mais, uma vez que deixaram de existir, pois o detergente “desmanchou” as membranas daquela organela. O liquido do tubo ficou “todo verde”, porque ao destruir os cloroplastos o detergente “libera” a clorofila. Como esta é uma pequena molécula, a força centrifuga aplicada não consegue precipitá-la, como também não precipita antocianina, que também é uma molécula pequena.

Conclusão

Adicionou-se 18 ml de água em 1 gota de vinagre, utilizando uma proveta de 100 ml pegou-se 3 ml de água e pingou-se na planta Tradescantia,colocou-se a planta dentro de um recipiente, na qual foi amassada, triturada usando-se um pistilo, após a planta ser triturada ficou um liquido, que colocou-se em um tubo de micro-centrifuga e foi centrifugado, antes de ser colocado no tubo de micro-centrifuga o liquido tinha uma coloração verde-escuro, e após ser centrifugado ficou duas regiões no tubo; o pelliet e o sobre nadante, no pelliet ficou-se a parte densa, e na região sobre nadante ficou-se a parte liquida, que ficou-se com uma coloração vermelha. Com a proveta pegamos o sobre nadante e transferimos para um novo tubo.

Descartamos os resíduos que ficou na região mais densa do tubo, e pegamos o liquido que ficou na região sobre nadante e colocamos no mesmo tubo e centrifugamos novamente e ficou-se com a coloração roxa, ficou com a cor roxa por causa da presença do pigmento antocianina (que fica na região sobre nadante do tubo) e na região mais densa do tubo ficaram os cloroplastos.

Depois retirou o sobrenadante e colocou-se água acidulada e centrifugou novamente. Colocou logo após o detergente e centrifugou-se, notamos que o detergente degradou os restos de cloroplastos e eslusou os restos das membranas.

Referências Bibliográficas

 LACERDA, Guilherme Araújo

2013 Manual de aulas práticas em Bioquímica... / GuilhermeAraújo Lacerda. – Montes Claros : UNIMONTES,

Relatório de aula Prática 3: Cromatografia de pigmentos vegetais em papel

Cromatografia de pigmentos vegetais em papel

Introdução

A palavra cromatografia vem do grego e significa “escrever com cor” (chromatus - cor e graphein - escrever).

A cromatografia é uma técnica de separação especialmente adequada para ilustrar os conceitos de interações intermoleculares, polaridade e propriedades de funções orgânicas, com uma abordagem ilustrativa e relevante.

A cromatografia em papel (CP). Trata-se de uma técnica simples para análise de amostras em pequenas quantidades, aplicada principalmente na separação e identificação de compostos polares, tais como açúcares, antibióticos hidrossolúveis, aminoácidos, pigmentos e íons metálicos. É considerada uma técnica de partição líquido-líquido.

Objetivo

Extrair e diferenciar diferentes pigmentos vegetais pela técnica de cromatografia em papel.

Material

* 02 a 05 folhas verdes;
* 02 a 05 folhas variegadas (diferentes cores);
* 01 almofariz com pistilo;
* 20 ml de Álcool etílico comercial 54º GL;
* 20 ml de Solução de acetona comercial;
* 01 folha de papel filtro (coador de papel) nº 102 ou superior;
* 02 câmeras cromatográficas (frascos com tampa seladora);
* 01 proveta 100 ml;
* 01 lápis de escrever
* 01 régua de 10 a 30 cm;
* 01 tesoura;
* 01 cronometro.

Métodos

Foi preparado o papel filtro para dar prosseguimento ao processo de cromatografia, ou seja, mediu-se um pedaço em 9x9 cm no centro do papel aberto, sendo preparados quatro pedaços.

Foram coletados aproximadamente cinco folhas verdes e cinco coloridas para compara-las (folhas anexadas ao final do trabalho), folhas coletadas dia 18 de março de 2013 às 16hs35min.

Foram pesadas aproximadamente 0,5 g de folhas verdes e colocadas em um almofariz e maceradas com o auxilio de um pistilo, sendo adicionado aos poucos álcool etílico comercial 54º GL com uma proveta cerca de 20 ml. Esse processo foi repetido novamente, mas no lugar de acrescentar álcool, acrescentou-se acetona também 20 ml.

Após serem maceradas, o liquido contendo as folhas foram colocadas em câmeras cromatográficas cada um dos líquidos (frascos usados foram de maionese contendo tampa). Após os líquidos estarem nos frascos foram colocados em cada um deles um pedaço de papel e cronometrou o tempo em aproximadamente 05 minutos.

Usa-se o mesmo processo com folhas coloridas.

Resultados e Discussão

Os resultados encontrados foram os seguintes:

	Álcool	Acetona
Verdes	6,0 cm	7,5 cm
Coloridas	3,5 cm	6,5 cm

Conclusão

A técnica de cromatografia em papel possibilitou a separação e a identificação dos pigmentos apresentados, onde utilizamos uma folha colorida (vermelha) e outra verde. Podemos concluir que em aproximadamente 05 minutos o papel obsorveu mais rápido a acetona do que o álcool, isso ocorre devido ao fato ser mais volátil e ter mais afinidade com o pigmento da folha, notamos também que a coloração da solução com álcool apresentou-se uma coloração mais escura (verde mais escuro).

Trabalho apresentado à disciplina Bioquímica 

como requisito parcial de avaliação do 

Curso de Licenciatura em 

Ciências Biológicas 3º período.

 Referências Bibliográficas:

SANTOS, J.M.V.; MOZELLI, S. Práticas de laboratório: 1ª série ensino médio. Belo Horizonte: Editora Universidade, 2005. 56p.

VIEIRA, R. Fundamentos de bioquímica: textos didáticos. Belém do Pará,2003.

Relatório de aula Prática 5:ENZIMAS – Atividade da catalase in vitro

ENZIMAS – Atividade da catalase in vitro

Introdução

A vida depende da realização de inúmeras reações químicas que ocorrem no interior das células e também fora delas (em cavidades de órgãos, por exemplo). Por outro lado, todas essas reações dependem, para a sua realização, da existência de uma determinada enzima. 

As enzimas são substâncias do grupo das proteínas e atuam como catalisadores de reações químicas. Elas estão entre as biomoléculas mais notáveis devido a sua extraordinária especificidade e poder catalítico, que são muito superiores aos dos catalisadores produzidos pelo homem. Praticamente todas as reações que caracterizam o metabolismo celular são catalisadas por enzimas. Sendo que catalisador é uma substância que acelera a velocidade de ocorrência de certa reação química.

A catalase é uma enzima produzida pelos animais e vegetais, portanto de ocorrência geral, que degrada o Peróxido de Hidrogênio (H₂O₂ – água oxigenada) em H₂O e oxigênio livre.

2(H₂O₂) = 2H₂O + O₂

A ação dessa enzima é extremamente rápida. Uma molécula de catalase é capaz de degradar até 42000 moléculas de peróxido de hidrogênio por segundo, dependendo da concentração do peróxido. A concentração da catalase é alta em mamíferos especificamente no fígado, podendo ser detectada em humanos na sexta semana de desenvolvimento embrionário normal. No fígado a catalase esta confinada aos peroxissomos e, secundariamente nas mitocôndrias. Sendo ela produzida no reticulo endoplasmático rugoso e acumulada dentro da célula em organelas denominadas Peroxissomos. 

 Objetivo

Observar a ação da enzima catalase produzida no fígado para a degradação da água oxigenada, e também observar alguns fatores que influenciam em sua atividade enzimática.

Materiais

·       04 tubos de ensaio;

·       05g de areia fina lavada;

·       10 ml de água oxigenada de 10 volumes;

·       01 almofariz com pistilo;

·       01 placa de petri;

·       10 g de fígado cru fresco, cortado em pedacinhos iguais;

·       10 g de fígado fervido, cortado em pedacinhos iguais;

·       01 proveta de 10 ou 100 ml;

·       01 caneta de retroprojetor;

·       01 espátula;

·       01 pinça metálica;

·       01 lamina de Gilette.

Resultados e Discussão

Passo 01:

Primeiramente enumeramos os 04 tubos de ensaio para obtermos controle na observação dos materiais a serem analisados.

·       No Tubo 01, foi adicionado 2 ml de água oxigenada (H₂O – peróxido de hidrogênio) mais dois pedaços iguais e pequenos de fígado cru;

Observou-se que houve reação logo que o fígado teve contato com a água oxigenada fazendo com que a água espumasse, e tendo também um aquecimento no recipiente. Pois devido à reação, a enzima catalase presente no fígado degradou a água oxigenada fazendo com que seja liberado mais rapidamente o oxigênio permanecendo então somente a água;

·        No tubo 02, adicionou-se 2 ml de água oxigenada diluída em água mais um pouco de areia;

Observou-se que a areia e a água oxigenada não apresentaram nenhum tipo de reação, isso porque se tornou uma solução controle. 

Passo 02:

Triturar um pedaço de fígado, do mesmo tamanho do utilizado no tubo 01, com o auxilio do almofariz com areia.

·       No tubo 03, adicionou-se 2 ml de água oxigenada mais um pedaço de fígado cru macerado com areia no almofariz;

                Observou-se que a reação foi muito maior do que no tubo 1, contendo mais espuma e o aquecimento também foi maior. Uma explicação mais clara sobre o aumento da reação em comparação com o primeiro tubo, é que com a areia a maceração foi mais eficaz, ou seja, ela ajudou na trituração fazendo com que fosse liberada uma maior quantidade de enzimas.

·       No tubo 04, adicionou-se 2 ml de água oxigenada mais um pedaço de fígado previamente fervido;

  Observou-se que não houve desnaturação das catalases ao ferver, podendo haver pouca reação se não estiver devidamente cozido.

Conclusão

            A catalase é uma enzima que degrada a água oxigenada fazendo com que seja liberado o oxigênio e ficando somente a água. O fígado produz grande quantidade de catalase tornando assim um acelerador do processo de liberação de oxigênio pelo organismo.

            A experiência realizada com o fígado fez com que esclarecesse como é esse processo em nosso organismo, fazendo com que visualizássemos diretamente a reação catalítica.  

 Referencias bibliográficas: 

<http://www.sobiologia.com.br/conteudos/quimica_vida/quimica11.php> 

 <http://www.infoescola.com/bioquimica/enzimas/> 

<http://www.brasilescola.com/biologia/enzimas.htm> ;

<http://www.enq.ufsc.br/labs/probio/disc_eng_bioq/trabalhos_pos2003/const_microorg/enzimas.htm>

Relatório de aula Prática 2: LIPÍDEOS – transparências, micelas e arraste a vapor.

LIPÍDEOS – transparências, micelas e arraste a vapor.

Introdução

Lipídeos é um conjunto de substâncias químicas que, ao contrário das outras classes de compostos orgânicos, não são caracterizadas por algum grupo funcional comum, e sim pela sua alta solubilidade em solventes orgânicos e baixa solubilidade em água. Fazem parte de um grupo conhecido como biomoléculas.   Os lipídeos se encontram distribuídos em todos os tecidos, principalmente nas membranas celulares e nas células de gordura. A maioria dos lipídeos é derivada ou possui na sua estrutura ácidos graxos. Algumas substâncias classificadas entre os lipídeos possuem intensa atividade biológica; elas incluem algumas das vitaminas e hormônios.
Também são nutrientes responsáveis por inúmeras funções importantes para o organismo, além de sua função energética, liberam maior quantidade de calorias por grama, as gorduras são também excelentes veículos de vitaminas lipossolúveis (solúveis em gorduras). Fornecem moléculas fundamentais para o organismo (prostaglandinas, lipoproteinas e colesterol) e ácidos graxos essenciais (incapazes de serem sintetizados pelo organismo, necessitando serem introduzidos pela alimentação), incrementam o paladar dos alimentos e protegem contra variações de temperatura e contra a excessiva perda de água por transpiração. Quimicamente os lipídeos simples são ésteres de glicerol, moléculas constituídas por glicerol (que é um álcool) mais ácidos graxos.

Objetivos

• Conhecer e entender por meio de práticas as características dos lipídeos e suas micromoléculas nas interações com outras substâncias.

Material e Métodos

* 02 Contas gotas;
* 02 Tubos de ensaio;
* 20 gotas de óleo de cozinha;
* 10 gotas de detergente doméstico;
* 15 ml de água de torneira;
* 01 folha de papel toalha;
* 01 Erlenmeyer de 125ml ;
* 01 Tripé;
* 01 Tela de amianto;
* 01 Bico de Bunsen;
* 02 Rolhas de pano para vedar a saída de ar;
* 01 Tubo de ensaio de 100ml;
* 01 Becker grande;
* 01 Placa de gelo;
* 10g de gelo ou água gelada;
* Aproximadamente 30 cm de mangueira flexível;
* 05g de folha seca de eucalipto;
* 01 Balança METTLER – Toledo Pb 3002;
* 01 Almofariz com Pistilo;
* 01 proveta de 100 ml.

Resultados e Discussão

•   Papel transparente

Inicialmente foi realizado a prática testando a força de interação das moléculas de celulose constituintes da folha de papel toalha a partir de gotas de água e óleo e depois a colocou frente a luz para observar a transparência obtida em cada caso.

Observando então que a disposição do óleo para com a celulose que constitui o papel toalha fica mais forte e transparente podendo então ver a luz do outro lado do papel, ao contrário do resultado obtido pelas gotas de água, que ficou mais turva e densa, impossibilitando ver a luz do outro lado.

•  Observação de micelas

Com o auxilio da proveta graduada, dois tubos de ensaio foram preenchidos por aproximadamente 02 ml de água, em cada tubo foram pingados com a ajuda do conta gotas cerca de 10 gotas de óleo de cozinha, após adicionados as gotas de óleo pingou-se no tubo 01, 10 gotas de detergente.
Feito isso cada tubo foi homogenizado (agitado), com a intenção de misturar os componentes adicionados.

Ao comparar os tubos, percebeu-se que o tubo 01 que tinha o detergente, ficou com um aspecto diferente sendo que a água se misturou com o detergente, mas o óleo permaneceu
separado, e o tubo 02 como solução controle, percebeu-se que a água também não se misturou com o óleo. No tubo 01 ficou com um aspecto de água e detergente no fundo, óleo no meio e espuma do detergente por cima.

•  Arraste a vapor

Depois de realizadas as práticas do papel toalha e das micelas, foi realizada também a da folha do eucalipto ou Arraste a vapor. A folha do Eucalipto (Eucalyptus spp), colhida dia 02 de março do ano de 2013, aproximadamente ás 15hs00min, e secas em jornal. Cerca de 05g de folha de eucalipto seca foi pesada em uma balança (Balança METTLER – Toledo Pb 3002) disponibilizada pelo laboratório. Essa quantidade de folha foi triturada com a ajuda de um almofariz com pistilo, e após estar bem moída, foi colocada em um Erlenmeyer com 100 ml de água.

O Erlenmeyer com água e com a folha triturada foi colocado em uma base chamada de Tripé e encima de uma tela de amianto (materiais usados para realizar aquecimentos em laboratórios), abaixo do tripé continha um bico de bunsen, que aquece materiais. No Erlenmeyer foi introduzida uma das extremidades de uma mangueira flexível de aproximadamente 30 cm e a outra extremidade estava dentro de um tubo de ensaio de 100 ml, que estava dentro de um Becker grande com água gelada e uma placa de gelo, ambas as extremidades da mangueira foram tampadas ou vedadas as saídas de ar, tornando a mangueira a única entrada e saída de ar.

Ao ser aquecido o liquido do Erlenmeyer começou a ferver, assim o vapor passava de uma vidraria a outra por meio da mangueira, quando esse vapor chegava ao tubo de ensaio, ele condensava votando a fase liquida novamente, sendo somente o óleo do Eucalipto.

Trabalho apresentado à disciplina 

Bioquímica como requisito parcial d

e avaliação do Curso de Licenciatura 

em Ciências Biológicas 3º período.

  Referências bibliográficas

<http://www.enq.ufsc.br/labs/probio/disc_eng_bioq/trabalhos_pos2003/const_microorg/lipideos.htm>

 <http://nutricao.org/lipideos>

 <http://graduacao.iqsc.usp.br/files/Metabolismo-de-lip%C3%ADdeos.pdf>.

 <http://www.todabiologia.com/botanica/nomes_arvores.htm>.

Relátorio de aula Prática 6: ALBUMINA: pH e temperatura

Albumina: pH e temperatura

Introdução

As proteínas são as moléculas orgânicas mais abundantes e importantes nas células e perfazem 50% ou mais de seu peso seco. São encontradas em todas as partes de todas as células, uma vez que são fundamentais sob todos os aspectos da estrutura e função celulares. Existem muitas espécies diferentes de proteínas, cada uma especializada para uma função biológica diversa. Além disso, a maior parte da informação genética é expressa pelas proteínas.

O ovo é uma grande fonte de proteína. As proteínas são de extrema importância para o nosso organismo por sua função construtora e reparadora alem de participarem da formação de hormônios, enzimas e anticorpos, a albumina é a proteína que tem alto valor biológico, excelente biodisponibilidade (facilmente aproveitada pelo organismo e fácil digestão).


Objetivo

• Verificar a alteração da albumina em função da mudança de pH e da temperatura.

Material e Métodos

* 01 Clara de ovo;
* 01 Béquer ou copo (para quebrar o ovo e separar a clara);
* 10 Gotas de ácido acético (vinagre);
* 10 Gotas de álcool;
* 01 Bico de Bunsen;
* 03 Tubos de ensaio;
* 01 Presilha (pregador - para aquecimento do tubo de ensaio);
* 01 Conta-gotas ou pipeta de Pasteur.

Adicionar no:
Tubo 1: 10 gotas de vinagre e uma pequena quantidade de clara de ovo;
Tubo 2: 10 gotas de álcool e uma pequena quantidade de clara de ovo;
Tubo 3: controle (aquecimento da clara).

Resultados e discussão

No tubo 01 foram adicionados clara e dez gotas de vinagre, onde este fez com que houvesse a desnaturação das proteínas, fazendo com que a clara se coagulasse, diminuindo então no seu pH, provocando o rompimento de algumas pontes de hidrogênio.

No tubo 02, foram adicionados clara e dez gotas de álcool, fazendo o mesmo processo do vinagre, sendo o álcool um solvente orgânico, ele promove o rompimento de interações hidrofóbicas que estabilizam as proteínas globulares.
No tubo 03 foi adicionado somente a clara, a fim de se tornar uma solução controle. Essa solução controle sofreu um aquecimento com a ajuda do Bico de Bunsen, onde se notou que seu líquido tornou-se esbranquiçada e com uma consistência sólida, onde pelo fato de ter sido aquecida provocou uma desnaturação da albumina, pois pelo aumento da temperatura atingiu as pontes de hidrogênio de forma complexa.

Relatório apresentado a Universidade Estadual de Montes Claros - UNIMONTES, curso de Ciências Biológicas- licenciatura, 3º período, como forma de avaliação parcial na disciplina de Bioquímica.

Relatório de aula prática 1: CARBOIDRATOS – Identificando Amido em nossos Alimentos.

CARBOIDRATOS – Identificando Amido em nossos Alimentos.

Introdução

 O Amido é um polissacarídeo, sendo a principal substância de reserva energética de plantas e algas formadas por moléculas de glicose ligadas entre si, dessa forma, não o encontramos em alimentos de origem animal.

Desempenha diversas funções em nosso organismo, entre elas a nutrição das células do sistema nervoso central. O corpo vai usar todos os artifícios para manter essas células alimentadas, pois o suprimento de glicose não pode parar. Com a diminuição de carboidratos da dieta, o organismo passa a usar as proteínas para produzir energia, causando possível perda da massa muscular. A ingestão correta de carboidrato previne o uso da proteína muscular.

Objetivo

Identificar a presença dos carboidratos pela reação com o reagente em diferentes alimentos.

Material e Métodos

• 0,5 g de Feijão cozido;
• 0,5 g de Sal de cozinha;
• 0,5 g de Açúcar cristal;
• 0,5 g Farinha de trigo;
• 0,5 g Fubá;
• 0,5 g Arroz cozido;
• 0,5 g macarrão cozido
• 0,5 g de batata crua
• 0,5 g de batata cozida
• 09 Tubos de ensaio;
• 01 Béquer
• 15 mL de Água da torneira;
• 01 Conta gotas;
• 01 Suporte para tubos de ensaio;
• 01 Pincel para vidro.
• 01 Pinça

 Reagentes e soluções: 45 gotas do Corante Lugol.

 Métodos:

No dia 08 de março organizamos os tubos de ensaio no suporte para tubos e os numeramos, com o pincel, de 1 a 9:

Figura 1- Os tubos foram organizados no suporte para tubos e numerados de 1 a 9.

Com o auxilio da pinça colocamos os alimentos nos seus respectivos tubos: 

Figura 2- Os alimentos foram colocados no tubo com o auxilio da pinça.

Tubo 1: Feijão

Tubo 2: Sal

Tubo 3: Açúcar

Tubo 4: Farinha de Trigo

Tubo 5: Fubá

Tubo 6: Arroz

Tubo 7: Macarrão

Tubo 8: Batata crua

Tubo 9: batata cozida

Os alimentos foram colocados ate a medida da metade do suporte para tubos.

            Após colocar os alimentos, foi adicionada água da torneira, com o auxilio do béquer, em todos os tubos até a medida da altura do suporte para tubos.

  Figura 3- Com o auxílio do béquer, foi adicionada a água nos tubos        

          

            Em seguida, movimentamos os tubos para que os alimentos se misturassem com a água.

.                                                     Figura 4- Os tubos foram movimentados para a mistura da  água com os alimentos.

            Com o auxilio do conta gotas, foi adicionado cinco gotas do corante Lugol em cada tubo e observado a coloração que se formava.

Figura 5- Foram adicionadas cinco gotas de Lugol em cada tubo de ensaio...

Resultados e Discussão

Após o adicionamento do Lugol observamos a seguinte mudança de coloração:

Tubo 1: Coloração inicial: transparente;

Coloração final: roxo claro.

Tubo 2: Coloração inicial: branco;

Coloração final: amarelado.

Tubo 3: Coloração inicial: transparente;

Coloração final: amarelado.

Tubo 4:Coloração inicial: branco;

Coloração final: roxo.

Tubo 5:Coloração inicial: amarelado;

Coloração final: roxo claro.

Tubo 6: Coloração inicial: branco leitoso;

Coloração final: roxo claro.

Tubo 7: Coloração inicial: transparente;

Coloração final: roxo claro.

Tubo 8: Coloração inicial: transparente;

Coloração final: roxo.

Tubo 9: Coloração inicial: transparente;

Coloração final: roxo claro.

Assim, podemos observar a presença de amido nos alimentos pela tabela.

Tabela 1- Verificando a presença de amido nos alimentos.

 Conclusão

                Com o uso do Lugol foi possível constatar que o Feijão, Farinha de trigo, Fubá, Arroz, Macarrão e a Batata possuem o amido (após a aplicação do Lugol a cor resultante foi roxa assim constatando que havia amido nos alimentos) enquanto o Sal e o Açúcar não possuem (após a aplicação do Lugol a cor resultante não foi roxa assim constatando que não havia amido nesses alimentos).

Relatório apresentado a Universidade Estadual de Montes Claros - UNIMONTES, curso de Biologia Licenciatura, 3º período, como forma de avaliação parcial na disciplina de Bioquímica.

Referências Bibliográficas:  LACERDA, Guilherme Araújo 2013 Manual de aulas práticas em Bioquímica... / GuilhermeAraújo Lacerda. – Montes Claros : UNIMONTES,